未知的味觉

1.器皿的选择与洗涤 1．1器皿的选择   对于微量元素分析来说，所用器皿的质量以及洁净与否对分析结果至关重要。因此在选择用于保存及消化样品的器皿时，要考虑到其材料表面吸附性和器具表面的杂质等因素可能对样品带来的污染。一般来说，实验室分析测定所用仪器大部分为玻璃制品，但是由于一般软质玻璃有较强的吸附力，会将待测溶液中的某些离子吸附掉而丢失，因此试剂瓶及容器最好避免使用软质玻璃而使用硬质玻璃。另外目前微量元素分析常用的还有塑料,石英,玛瑙等材料制成的器皿，可根据测定元素的种类以及测定条件来选择适用的器皿。 1．2器皿的洗涤   容器的洁净是获得准确测定结果的保证。一般洗涤程序应为：器皿先用洗涤剂刷洗，再用自来水冲洗干净,30%硝酸浸泡48小时,然后用蒸馏水冲洗数次,最后再用超纯水浸泡24小时烘干备用.有试验证明经以上程序处理过的器具无锌﹑铜﹑铁﹑镁等元素存在。 2.水及试剂 2．1水的纯度   测定微量元素含量所用水的纯度对分析测定结果有很大影响，不纯净的水会污染待测样品影响测定结果。一般来说，使用去离子水即可满足要求，使用超纯水（电阻大于10６欧姆）或经亚沸石英蒸馏器蒸馏的新鲜双蒸水则更好。 2．2试剂及保存   在原子吸收分析中，酸试剂以硝酸﹑高氯酸和盐酸最为常用。其中浓硝酸和高氯酸为强氧化剂，常被用于样品的消解；稀盐酸则常被用于无机物样品的溶解。因为无机酸中一般都含有少量金属离子存在，因此应选择纯度较高的试剂。一般来说，各种酸试剂应使用优级纯制剂。另外，用以配制标准溶液的标准物质应选用基准试剂。总之，以选用的试剂不污染待测元素为准则。在实践中，如果在仪器灵敏度范围内检测不出待测元素吸收信号就可以使用。贮备液应为浓溶液（一般来说浓度为1000ppm的贮备液在一年内使用其结果不受影响）。标准曲线工作液因为较稀应当天使用，久放则其曲线斜率会有改变。 3．样品的前处理 样品的预处理是在进行原子吸收测定之前，将样品处理成溶液状态，也就是对试样进行分解，使微量元素处于溶解状态。样品经过预处理后才能进行原子吸收光谱测定。要使饲料样品中的微量元素处于游离状态，常用的方法有高低温灰化法﹑湿消化法﹑酸溶解法以及密封微波溶样法，下面就对各种方法作一介绍。 3．1干法灰化   饲料原料及配合饲料的预处理可采用此法。具体可分为马福炉高温灰化法和等离子体低温灰化法两种。高温灰化：即将饲料样品在高温下灼烧，使样品中含有的大量纤维素，蛋白质和油脂等有机物质分解挥发，仅留下矿物质灰分。饲料中Cu﹑Fe﹑Mn﹑Zn﹑Mg的测定方法国家标准就采用的高温干灰化法[5].高温灰化具体方法为：将过八十目筛经准确称量的风干饲料样品（一般为1.0000-3.0000g）放入洁净的瓷坩埚中，先在300℃的电热板上炭化，待无烟产生后转至马福炉中,450℃高温灼烧3-5小时（至样品白色或灰白色无炭粒为止），在干燥器内冷却后取出，然后缓慢滴加1：1盐酸或1：1硝酸5ml溶解后，无损失地转移到100ml容量瓶中，用超纯水或新鲜双蒸水定容至刻度待测，同样方法测定空白液。干灰化法的优点是适合于大批样品分析，且酸空白低，缺点是样品消化时间长﹑难以彻底消化﹑且回收率比较低（如铅﹑镉﹑锌等）。干法灰化需要掌握好灰化温度和灰化时间，最佳灰化温度和时间是确保样品灰化完全和防止元素挥发损失的关键条件,时间过短则样品分解不完全,回收率低,时间过长则易带来元素的挥发损失.400-500℃一般元素灼烧3-5小时均能回收完全，锌必须灼烧4小时以上才能解离并被盐酸提取。但应注意易挥发元素的测定如Hg﹑As﹑Se等不宜用高温灰化法[3，4]，因此法易导致元素大量丢失。另外，较好的灰助剂,如酸﹑铵盐等可加速试样的分解和提高元素的回收率,结合使用不但灰渣为白色且疏松易于溶解。低温灰化：原理是利用高频电场作用产生激发态等离子体来消化样品中的有机体[2]。具体方法是：将干燥后经准确称量的样品放在石英烧杯中，引入氧化室，用氧等离子体低温灰化使呈白色粉末状为灰化终点，灰化后的其他操作步骤同高温灰化。等离子氧低温灰化与高温灰化相比其优点在于可抑制无机成分的挥发，成分回收率比坩埚高温灰化法高，但由于等离子条件依赖于复杂的参数，因此测定重现率很低，且灰化速度慢，目前在原子吸收光谱分析中应用较少。 3．2湿法消化   饲料原料及配合饲料的前处理也可使用湿法消化，即用酸消煮来破坏有机物。湿消化法常用的酸是硝酸，高氯酸，两种酸用量比一般为10：1。在使用硝酸-高氯酸消化时一定要先将硝酸加入放置几小时或过夜，使之与样品充分混合，在电热板上硝化以后然后再加入高氯酸，以防止在硝酸分解完全后局部温度升高而导致高氯酸和有机物作用产生爆炸危险。方法如下：准确称取1.0000克风干样品于三角瓶或剀氏烧瓶中，用少量超纯水润湿后加20毫升硝酸,混匀,盖上表面皿放置过夜，置于可调电炉上低温消煮至近干,若样品未溶解完全则继续加硝酸消煮直至溶液近干为止，再加入2毫升高氯酸，加热，待冒白烟溶液未干前停止加热，将溶液无损失地转移到100毫升容量瓶中，用超纯水定容至刻度混匀待测,并作空白. [...]

氨基柱是同时可以用于正相条件和反相条件的这一点很多用户都已经知道；但是要注意到的是：正相溶剂和反相溶剂往往是不互溶的，对这一点的忽略可能会带给使用者一些麻烦。

反相柱填料主要以硅胶为基质，在其表面键合非极性的十八烷基官能团（ODS）称为C18柱，其它常用的反相柱还有C8,C4,C2和苯基柱等。另外还有离子交换柱，GPC柱，聚合物填料柱等。本文重点介绍反相色谱柱的选择和使用：
一、反相色谱柱的选择
1．柱子的PH值使用范围
反相柱优点是固定相稳定，应用广泛，可使用多种溶剂。

为了更好好的服务科研，我校制定了仪器共享计划及一系列规定，仪器共享网主要的目的是提高大型仪器设备的利用率和完好率，有效调动大型仪器设备所属单位和实验室向全校和社会开放、专管共用，提供优质服务的积极性，满足学校教学、科研对资源共享的需求，并根据教育部《高等学校仪器设备管理办法》和《东北农业大学大型仪器设备管理办法》等有关文件的精神，特制订仪器共享方案，原文地址如下。
东北农业大学大型仪器设备开放共享有偿使用暂行方案(总 则)
仪器共享网地址如下：
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本单位及本人积极响应这一计划，并于今日下午，为兽医学院，利用流式细胞仪测定细胞周期和晚期调亡。由于样品前处理较好，除个别样品杂点较多外，其他数据非常好。对手医学院那位同学做细胞悬浮液的实验技能赞一个。:)
如察看我院共享设备，请查看:
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近日DNA含量、调亡、细胞周期分析的得到的数据都不是很好，经过查阅资料，发现主要问题还在于前处理。
1、染色问题，染色加入足量的染料.以确保样木能与染料充分结合，PI的推荐浓度至少是20 ug/ 10的6次方个细胞。染色液过量与不足，均可造成分析背景过大。
2、由于PI也可以与RNA结合，因此应该用Rnase处理样品，一般的添加量大约是10的6次方个细胞加大约1000U的RNAase，通常将将染液和RANse配到一起，这个浓度也是要探索的，量不对，容易出现异常峰。
3、直方图道数与一倍体细胞的G1峰位置的选择，细胞数直方图的道数值至少应为512，G峰道数应不低最大道数的五分之一即当直方图的最大道数为1 024时.G，峰的位置应该是200.直方图的最大道数为512时.G，峰的位置应为1000通过调节PMT(光电倍增管)的电压值以获得正常一倍体细胞的G峰的理想位置，这点很重要，但是问题是样品的不均一性，细胞浓度不同，导致荧光强度不同，所以出现的值很不好，所以各样本间的细胞浓度值要尽量军均一，否则不能出现想要的图像。
4、一般来讲，收集细胞要在20000个以上，所以细胞悬浮液的量也要足够，在细胞浓度10的6次方个以上时，也大约要500微升。
提供一个新鲜组织DNA分析的材料！右键点击后另存为， 直接点击打不开。。。。。dna analysis of application PI.pdf